УДК 619:617-089.5:636.92
Стаття: "Умови, необхідні для успішної анестезії кроликів"
Successful management of rabbit anesthesia

О.М. Мелентьев кандидат ветеринарних наук, доцент кафедри хвороб птахів, риб, бджіл та хутрових звірів. ФГОУ ВПО "Санкт-Петербурзька державна академія ветеринарної медицини".

Чинники, що впливають на ризик анестезії у кроликів

Існує багато факторів, що впливають на ризик анестезії.Найбільш істотними є стрес, гіпоксія, що передують хвороби. Клінічний огляд перед анестезією дає уявлення про загальний стан кролика. Зважування необхідне точного розрахунку доз використовуваних препаратів. , коректний підрахунок доз та спостереження за перебігом анестезії роблять її безпечнішим.

Існують багато проблем, пов'язаних з rabbit anesthesia: stress, hypoxia and preexisting diseases. Clinical examination prior to anesthesia gives на думку загального здоров'я status of rabbit. Відповідно, що необхідно, щоб визначити, що dosages drugs that are to be used. Добре anestetic equipment, коректна зміна drog і observant anesthetist improve anesthetic safety.

За десятиліття використання кроликів як лабораторних тварин та розвитку ветеринарної медицини кроликів, що містяться як домашні вихованці, були зроблені спроби використання більшості препаратів, що застосовуються у медичній та ветеринарній анестезіології. Накопичений досвід свідчить, що багато засобів, що застосовуються для седації, анестезії та аналгезії, але ефективні та безпечні дози препаратів, їх фармакодинаміка у цих тварин, застосування комбінацій препаратів має значні особливості.

Анестезія обґрунтовано сприймається і власниками як високо ризикована процедура, хоча деякі наявні препарати можна використовувати досить безпечно. Дослідження смертності собак, кішок та кроликів, пов'язаної з анестезією та седацією, опубліковані Brodbelt DC. at al. у 2008 році, показали, що середня смертність собак становить 0,17%, кішок 0,24%, а кролів 1,39%. Під час розробки анестезіологічного протоколу необхідно враховувати значні біологічні особливостіцих тварин, що дозволить зменшити ризик.

Існує багато факторів, що впливають на ризик анестезії, найбільш суттєвими є стрес, гіпоксія, що передують хворобі. Часто кілька перелічених чинників є в одного кролика. Гучні звуки, незнайома обстановка, запах інших тварин також впливають.

Інтубування кролика

Інтубування важко через анатомічні особливості ротової порожнини, носоглотки та трахеї. Через малий обсяг грудної клітки у кроликів часто розвивається гіпоксія. Дихальний об'єм становить лише 4-6 мл/кг і легені мають невеликий об'єм у порівнянні з органами черевної порожнини. Вдих і видих здійснюються переважно з допомогою рухів діафрагми, а чи не з допомогою межреберных м'язів. Таке положення кролика під час анестезії, коли органи черевної порожнини тиснуть на діафрагму, може перешкоджати дихальним рухам.

Навіть зовні здорові вони можуть бути прихованими носіями таких заразних хвороб як пастерельоз та енцефалітозооноз. Поразка легень, спричинена насамперед Pasteurella multocida, може утруднити газообмін в альвеолах. Поразки нирок та головного мозку, спричинені енцефалітозоонозом, можуть призвести до інших ускладнень.

Крім того, якщо кролик перед газовою анестезією не був заспокоєний, він, відчувши запах газу, затримує дихання, виникає апное у поєднанні з брадикардією та гіперкапнею. У дослідженні Flecknell та ін. (1996), період апное тривав від 30 секунд до 2 хвилин при використанні ізофлюрану та галотану через лицьову маску та в індукційній камері. Деякі анестетики (медетомідин/кетамін) спричиняють падіння артеріального тискута оксигенації, збільшуючи ризик гіпоксії

Хвороби зубів та порушення роботи кишечника викликають виснаження та слабкість, посилена слинотеча може призвести до зневоднення та порушення балансу електролітів. Ожирілі кролики схильні до розвитку гіпертензії та кардіальної гіпертрофії. Гіперінсулінемія, гіперглікемія та збільшення рівня тригліцеридів часто зустрічаються у сироватці крові ожирілих кроликів, і ліпідоз печінки у них розвивається швидко, після короткого періоду без корму, особливо якщо у кролика сильний стрес.

Ожирілі кролики - найважчі пацієнти для хірургічних операцій. Звільнення ендогенних катехоламінів внаслідок стресу та болю може бути причиною серцевої аритмії. Кролики надзвичайно чутливі до болю, особливо після операцій на черевній порожнині та видалення різців. Біль є особливо сильним стресором, він призводить до зменшення апетиту, уповільнення моторики кишечника, може викликати кишковий стаз і, зрештою, смертельний ліпідоз печінки. Вроджені вади серця, такі як дефект міжшлуночкової перегородки, призводять до кардіоміопатії, особливо у кроликів гігантських порід.

Клінічний огляд перед анестезією

Клінічний огляд перед анестезієюдає уявлення про загальний стан кролика. Деякі ослаблені кролики потребують надходження поживних речовин перед анестезією. Дегідратовані, в стані шоку або гіпотензії пацієнти потребують внутрішньовенного або внутрішньокісткового введення рідин. У кроликів не буває блювоти, таким чином, у витримці без корму необхідності немає, хоча короткий період в 1-2 години дозволяє бути впевненим, що в порожнині рота немає кормових частинок, і шлунок не переповнений.

Зважування необхідне точного розрахунку доз використовуваних препаратів. Кількість корму у шлунково-кишковому тракті змінюється у різний час дня та може вплинути на результати зважування. Кролики можуть мати значну кількість корму в травному тракті, особливо у сліпій кишці. Жирні тварини потребують менших доз препаратів, ніж худі, тому деякі автори рекомендують розраховувати дози виходячи з рівня метаболізму, що залежить від маси тіла.

Під час анестезії небезпека гіпоксії можна знизити, якщо покласти її таким чином, щоб органи черевної порожнини не давили на діафрагму. Витягування шиї та вилучення язика з ротової порожнини не тільки дозволяє стежити за кольором слизової оболонки, але також прибирає основу язика з глотки та відкриває дихальні шляхи.

Дихальні рухи здійснюються переважно за рахунок рухів діафрагми, і візуальний підрахунок може бути утруднений, хірургічні поля також ускладнюють спостереження за диханням. У всіх випадках краще використовувати монітор стану пацієнта.

При анестезії вони потребують постійного надходження кисню. Оксигенація перед анестезією знижує ризик виникнення гіпоксії, якщо кролик затримує дихання. Кисень можна давати через лицьову маску (Фото. 1), ендотрахеальну або назальну трубку або навіть через трубку, вставлену в горлянку через рот.

Збалансована анестезія

Як і тварин інших видів, тільки збалансована анестезіядозволяє успішно провести хірургічну операцію. Занадто легка анестезія призводить до пробудження тварини під час операції при сильному подразненні тканин і проявляється рухом тварини або навіть криками, у такого пацієнта може розвинутись гіпоксія та ціаноз. Реакція анестезіолога на тривалу затримку дихання – зниження концентрації анестетика – може призвести до надто легкого наркозу та появи чутливості. Збільшення концентрації газу необхідне поглиблення наркозу. Якщо кролик не інтубований, запах газу викликає затримку дихання та надходження газу припиняється, досягнення хірургічного наркозу не може. Повільне збільшення концентрації газу після ефективної премедикації запобігає затримці дихання при використанні лицьової маски.

Ендотрахеальна інтубація

Ендотрахеальна інтубація(фото. 2) запобігає появі проблем, пов'язаних із затримкою дихання, дозволяє вводити кисень і значно знижує смертність. Ендотрахеальна інтубація дозволять також у разі необхідності проводити штучну вентиляцію легень. Хороший змістпісля операції та адекватна аналгезія необхідні для зменшення болю та стресу, відновлення апетиту та запобігання розвитку ліпідозу печінки.

Прозора лицьова маска дозволяє спостерігати за кольором слизових оболонок. Необхідно мати набір дрібних ендотрахеальних трубок (2,0-5,0 мм). Кролики мають невеликий дихальний об'єм (4-6 мл/кг) і анестетик циркулює в невеликому обсязі. Хоча роторозширювачі використовувати необов'язково, вони дозволяють краще стежити за станом ротової порожнини та гортані. Ларингоскоп з маленьким клинком (0 або 1) можна використовувати для візуалізації гортані та полегшення інтубації.

Пульсоксиметр

Як частину анестезіологічного обладнання можна використовувати пульсоксиметр(Фото. 3), найкращим місцем для його прикріплення є мова, але це неможливо, якщо для анестезії використовується лицьова маска. Задовільний сигнал можна отримати з пахових складок або з основи хвоста, якщо вищипати волосся та розміщення сенсора можливо, також можна використовувати ректальний зонд.

Можливість використання дихального монітора залежить від розмірів кролика. Електрокардіограф можна використовувати як серцевий монітор. Ректальну температуру можна визначити стандартним або цифровим термометром з дистанційним датчиком. Датчик повинен бути змащений та обережно введений у пряму кишку для постійного контролю ректальної температури весь період анестезії.

Таким чином, хороше обладнання для анестезії, коректний підрахунок доз та спостереження за перебігом анестезії кроликів роблять її безпечнішою. та застосовуваних препаратів залежить від загального стану пацієнта, характеру та планованої тривалості операції, можливостями клініки та власника, при цьому важливу роль відіграє практичний .

ЛІТЕРАТУРА

1. Пламб, Дональд К. Фармакологічні препарати у ветеринарній медицині // М., 2002. - 856 с.
2. Aeschbacher, G. Rabbit anesthesia // Compendium on Continuing Education, 1995, 17, 1003-1011
3. Brodbelt DC, Blissitt KJ, Hammond RA, Neath PJ, Young LE, Pfeiffer DU, Wood JL. // Ризик смерті: усвідомлювальне становище в периоперативних малих animal fatalities. Vet Anaesth Analg. 2008 Sep;35(5):365-73
4. Calasans-Maia MD, Monteiro ML, Ascoli FO, Granjeiro JM. rabbit як animal model for experimental surgery // Acta Cir Bras.2009 Jul-Aug;24(4):325-8
5. Domestic Rabbits: Diseases and Parasites / N.M. Patton, KW. Hagen, JR. Gorham, і R.E. Flatt. Oregon State University, 2008. – 30 р.н.
6. Flecknell, P.A., Cruz, I.J., Liles, J.H., Whelan, G. Induction anaesthesia з halothane і isoflurane в окраїні: comparison of use of face-mask or anaesthetic chamber // Lab Anim., 1996; 30, 67-74
7. Gillett, C.S. Selected drug dosages and clinical reference data // У Бібліотеці лабораторії Rabbit, 2nd edn. (P.J. Manning, D.H. Ringler, C.E. Newcomer, eds), Academic Press, 1994; pp 468-472
8. Grint NJ, Murison PJ. Порівняння кетаміну-мідазоламу і кетаміну-медетомідіновими комбінаціями для індукції анаестезія в rabbits // Vet Anaesth Analg. 2008 Mar;35(2):113-21
9. Inglis S, Strunk A. Rabbit anesthesia // Lab Anim (NY), 2009 Mar; 38 (3): 84-5
10. Keeble E., Meredith A. Rabbit Medicine & Surgery (Self-assessment Colour Review) // Manson Publishing, Jan 2006, 192р.
11. Lichtenberger M, Ko J. Anesthesia і analgesia для малих матусь і птахів // Vet Clin North Am Exot Anim Pract. 2007 May;10(2):293-315
12. Mason D.E. Анестесія, аналгесія, і седація для малих матусь // В Ferrets, Rabbits and Rodents, Clinical Medicine and Surgery. (E.V. Hillyer, K.E. Quesenberry, eds). 1997. - pp 378-391
13. Rabbits: Health, Husbandry and Diseases / V.C.G. Richardson. Blackwell Science Ltd, 2000. - 184р.
14. Small Animal Clinical Pharmacology/Jill Maddison at al. - Elsevier Limited, 2008. - 589 p.

Дмитро Тамошкін– головний ветлікар ветклініки «Ветус»

Мелентьєв Олег Миколайович, кандидат ветеринарних наук, ветеринарний лікар центру ветеринарної медицини "Ветус".

Значні біологічні особливості кроликів, що відрізняють їх від інших свійських тварин, необхідно враховувати і післяопераційний період. Кролика для відновлення після наркозу поміщають на теплу підстилку або в клітку, що обігрівається, з теплою підлогою (рис. 1, 3), необхідна температура близько 35˚С. Як тільки температура тіла кролика стабілізується, і кролик зможе сидіти на лапах, обігрів необхідно зменшити до 26-28˚С, оскільки кролики в такому стані не можуть дихати часто і чутливі до гіпертермії. Відсутність зовнішніх подразників та комфортні умови довкілля полегшують відновлення після наркозу. Тільки кролика, що повністю прокинувся, можна містити при кімнатній температурі.

Для утримання найкраще підібрати приміщення, де немає інших тварин та відсутній їхній запах. Як тільки кролик відновиться достатньо для того, щоб їсти та пити, необхідно забезпечити його водою та кормом. Відразу після пробудження та весь післяопераційний період краще давати сіно, траву, моркву. Після екстракції різців необхідно давати кролику м'який, пюреподібний чи тертий корм. Сено гарної якості можна використовувати і як підстилку для надання кроля положення на грудях (рис. 2).

Хороша техніка операції, швидкість її проведення та відповідний шовний матеріал зменшують дискомфорт у ділянці операційної рани, але в більшості випадків потрібна післяопераційна анальгезія. Оцінка болю у кроликів може бути утруднена, тому що вони не виявляють багатьох ознак болю, характерних для тварин інших видів, а тихо сидять біля задньої стінки клітини, не реагуючи на навколишнє. Кролики надзвичайно чутливі до болю, особливо після операцій на черевній порожнині та видалення різців. Біль та стрес стимулюють симпатичну нервову систему, знижують моторику шлунково-кишкового тракту. Зниження моторики кишечника є пусковим механізмом розвитку каскаду несприятливих процесів, які призводять до ліпідозу печінки та смерті.

Визначити наявність болю можна шляхом спостереження за твариною, але для цього необхідне близьке спілкування з нею до операції та знання особливостей її поведінки. Такі фізіологічні параметри, як температура тіла, частота серцевих скорочень і дихання, під впливом болю змінюються, але визначення цих параметрів необхідно витягнути кролика з клітини, що саме собою здатне викликати їх зміну. Кролики, що відчувають біль, не підходять до передньої стінки клітини, побачивши корм. Вони не доглядають вовну і можуть стати агресивними по відношенню до інших тварин, що містяться в цій же клітині. Біль у черевній порожнині може виявлятися прийняттям зігнутого положення тіла та скреготом зубів. Іноді кролики поводяться неспокійно, періодично підстрибують і крутяться дном клітини. Наслідком болю є повна відмова від корму.

Аналгезію лабораторних тварин, у тому числі кролів, вивчено значною мірою. Для визначення ефективності анальгетиків було розроблено систему оцінки болю, хоча індивідуальні особливості можуть проводити сприйняття болю, особливо середньої інтенсивності. Дози препаратів, потрібні для забезпечення аналгезії, залежать від подразника, тому необхідно стежити за кроликом та визначати його реакцію на аналгезію. Біль - це стан, що загрожує життю кролика, тому всі кролики, які відчувають біль, повинні бути забезпечені аналгезією.

Аналгезія - це "відсутність больової чутливості або полегшення болю без втрати свідомості". У відповідь на біль та інші стрес-фактори звільняються ендогенні опіоїди та зменшують больову чутливість. Запалення або гіпоксія у місці ушкодження призводять до звільнення ноцицептивних речовин, таких як кініни, які, своєю чергою, стимулюють утворення простагландинів.

Опіоїдні анальгетики – препарати центральної дії, що використовуються при сильному больовому синдромі, мають специфічний вплив на центральну нервову систему. Фармакологічні ефекти пов'язані із впливом на опіоїдні рецептори ЦНС. Різноманітні опіоїдні рецептори виявлені в головному мозку, спинному мозку та інших тканинах, у тому числі і в шлунково-кишковому тракті. Опіоїди викликають певний ефект залежно від типу рецепторів, і в їхній дії є видові відмінності:

- µ- (mu) рецептори головним чином відповідають за супраспінальну аналгезію, ейфорію, пригнічення дихання та викликають у людини фізичну залежність;
- до-(kappa) рецептори в основному відповідають за спинальну аналгезію, міоз і седацію;
- σ- (sigma) рецептори відповідають за дисфорію (похмурий, буркотливо-дратівливий, злісний настрій з підвищеним занепокоєнням у відповідь на будь-який зовнішній подразник), галюцинації, збудження дихання та різні вазомоторні ефекти.

Інші рецептори, такі як δ-(delta) рецептори, є в різних тканинах. Вплив на µ- та к-рецептори найбільш важливий для полегшення болю.
Інші впливи, такі як пригнічення дихання, седація або вплив на моторику шлунково-кишкового тракту можуть бути або не бути корисними в залежності від ситуації, коли ці препарати застосовуються.

У кроликів наркотичні анальгетики використовуються для забезпечення аналгезії та, в деяких випадках, для анестезії. Їх також можна застосовувати після анестезії для продовження аналгетичного ефекту. З іншого боку, наркотичні анальгетики викликають у кроликів пригнічення дихання та психіки, гіпотермію та брадикардію.

Бупренорфін (Buprenorphine) – сильний, довготривалий анальгетик, частковий опіоїдний агоніст. У кроликів використовується для тривалої аналгезії з метою усунення гострого або хронічного болю в ділянці внутрішніх органів у дозі 0,02-0,05 мг/кг перорально або внутрішньом'язово кожні 6-12 годин; 0,5 мг/кг ректально кожні 12 годин. Бупренорфін також застосовують для запобігання пригнічувальної дії на дихання фентанілу після операцій, коли для наркозу використовують комбінацію фентаніл/флюанізон і бензодіазепіни.

Буторфанол (Butorphanol) – синтетичний агоніст-антагоніст опіоїдних рецепторів. У кролів буторфанол забезпечує аналгезію та легку седацію, не викликає пригнічення дихання, якщо не використовувати високі дози. Застосовують для зняття післяопераційного болю в дозі 0,4 мг/кг перорально кожні 4-6 годин.

Дослідженнями доведено, що використання високих доз буторфанолу викликає менший аналгетичний ефект, ніж нижчі. Період напіввиведення буторфанолу у кроликів у дозі 0,5 мг/кг становить 1,64 годин після внутрішньовенного застосування і 3,16 годин після підшкірного. Буторфанол можна використовувати для усунення гнітючого впливу на дихання µ-агоністів, таких як фентаніл, морфін і пефідин.

Трамадол (Tramadol) – опіоїдний анальгетик, похідне циклогексанолу. Неселективний агоніст µ-, δ- та до-рецепторів у ЦНС. Являє собою рацемат (+) і (-) ізомерів (по 50%), які по-різному беруть участь у знеболювальному впливі. Ізомер (+) є чистим агоністом опіоїдних рецепторів, має невисокий тропізм і не має вираженої селективності по відношенню до різних підтипів рецепторів. Ізомер (-), пригнічуючи нейрональне захоплення норадреналіну, активує низхідні норадренергічні впливи. Завдяки цьому порушується передача больових імпульсів до желатинової субстанції спинного мозку, що викликає седативний ефект. У терапевтичних дозах мало пригнічує дихання. Чинить протикашльову дію. Більше 80% трамадолу виділяється у кроликів через нирки. Після перорального застосування трамадолу у дозі 11 мг/кг. побічних ефектівне виникало. Період напіввиведення становив 145,4+/-81,0 хвилин; максимальна концентрація в плазмі крові 135,3 +/- 89,1 нг/мл. Рекомендована доза для кролів – 2,0-4,0 мг/кг кожні 12 годин.

Фентаніл/флюанізон (Fentanyl/fluanisone). Фентаніл – сильний опіоїдний агоніст, що діє переважно на µ-рецептори та викликає аналгезію, пригнічення дихання та – у людей – ейфорію. За силою аналгетичної дії у 20-100 разів перевищує морфін. Його аналгетичний ефект посилюється флюанізоном, який також знімає пригнічуючу дію на дихання. На думку багатьох авторів, це найкращий препарат, який використовується у кроликів для седації та анестезії, глибока аналгезія триває 3 години після введення. Комбінацію фентаніл/флюанізон використовують для премедикації, седації та сильної аналгезії або, у поєднанні з мідазоламом, для анестезії.

У деяких випадках альтернативою опіоїдним аналгетикам можуть бути нестероїдні протизапальні засоби (НПЗЗ), які інгібують синтез циклооксигенази, простагландинів та подібних до них речовин. Циклооксигеназа - це фермент, що сприяє утворенню простагландинів з арахідонової кислоти клітинних мембран. Існує два ізомери циклооксигенази: COX-1 та COX-2. Всі НПЗЗ володіють аналгетичними, антипіретичними та протизапальними властивостями. Їхній потенційний токсичний ефект пов'язаний з ізомерами циклооксигенази. COX-1 має низку фізіологічних властивостей, і пригнічення COX-1 вважається причиною більшості токсичних ефектів НПЗЗ. COX-2 утворюється у місцях запалення під впливом медіаторів запалення .
Карпрофен менше пригнічує циклооксигеназу і тому менш токсичний, він має інший механізм дії. Структура молекули також впливає на фармакологічну дію, особливо НПЗЗ, що відносяться до групи 2-arylproprionic acid subgroup (похідні пропіонової кислоти: карпрофен, кетопрофен та ведапрофен). У деяких видів тварин їхній метаболізм має відмінності. Зазвичай інтервал застосування НПЗЗ у новонароджених та старих тварин має бути більшим для зниження токсичності.

Пригнічення нормальної регуляції простагландинами може призвести до недостатньої перфузії у нирках у гіпотензивних пацієнтів та до гострої ниркової недостатності. Таке трапляється під час анестезії, особливо якщо є значна крововтрата, слід підтримувати кров'яний тиск введенням необхідної кількості розчинів. Бажано робити 24-годинну перерву між застосуванням НПЗЗ різних типів.
НПЗЗ можуть використовуватися для післяопераційної аналгезії та лікування хронічних остеоартритів. Дія НПЗЗ на синтез простагландинів у кроликів є значною. Простагландини стимулюють виділення у кроликів м'якого калу, інгібуючи перистальтику проксимального відділу кишечника та стимулюючи моторику дистальних відділів.

Аспірин (Aspirin) інгібує циклооксигеназу, що призводить до зменшення синтезу простагландинів та тромбоксантів, зменшує агрегацію тромбоцитів та запалення. Аспірин - ефективний анальгетик для кроликів, він застосовується як засіб першої допомоги, тому багато власників кроликів мають його вдома. Доза перорального застосування становить 100 мг/кг. Максимальна концентрація у сироватці крові у кроликів досягається через 1-2 години. Аспірин може викликати зменшення кількості тромбоцитів та тенденцію до кровотечі у лабораторних кроликів. Аналгетичні властивості слабші в порівнянні з деякими іншими НПЗЗ, такими як карпрофен і флуніксин.

Карпрофен (Carprofen) – слабкий інгібітор циклооксигенази з низьким співвідношенням COX-1:COX-2 та мінімальним токсичним ефектом. Карпрофен у зв'язку з його доступністю можна призначати після хірургічних операцій усім пацієнтам. Хоча він може застосовуватися перорально (1,5 мг/кг двічі на день), дослідження показали, що краще вводити його підшкірно або внутрішньовенно (2-4 мг/кг один раз на день).
При підшкірному введенні можуть виникнути несприятливі наслідки, пов'язані з можливим потраплянням препарату до дерми. Для зниження кількості ускладнень необхідно бути впевненим, що препарат потрапив у підшкірну клітковину, а не в дерму, і зробити масаж введення препарату після ін'єкції. Карпрофен особливо показаний при гострих болях після переломів та травм.

Флуніксин (Flunixin) – потужний інгібітор циклооксигенази, який успішно використовується як протизапальний засіб у корів та коней. Виробники не рекомендують використовувати його, поки пацієнт повністю не вийшов із загальної анестезії, оскільки цей НПЗЗ може призвести до зменшення ниркового кровотоку. Він також не може застосовуватись одночасно з іншими нефротоксичними препаратами, такими як гентаміцин. Флуніксин може бути використаний як аналгетик та протизапальний препарат у кроликів у дозі 1,1 мг/кг 2 рази на день, підшкірно.
Цікавим є можливість застосування інгібіторів циклооксигенази для лікування ентеротоксемії. Elmas M. еt al. (2008) успішно застосували з цією метою 2,2 мг/кг флуніксину та 5 мг/кг енрофлоксацину внутрішньовенно.

Кетопрофен (Ketoprofen). Застосування кетопрофену описано у дрібних ссавців, включаючи кроликів, він є альтернативою карпрофену та мелоксикаму. Застосовують перорально, двічі на день у дозі 1-3 мг/кг.

Мелоксикам (Meloxicam) – це НПЗЗ з низьким ставленням COX-1: COX-2. Він має сильну антиартритну дію і невелику здатність провокувати появу подразнення шлунка у тварин, порівняно з іншими НПЗЗ. Дослідження його токсичності показали хорошу переносимість та чудову стійкість до нього тканин кроликів.

Звільнення шлунка від цього препарату та інтестинальний транспорт не змінюються від терапевтичних доз мелоксикаму, крім короткочасного на кислотність шлунка. Дози, які суттєво перевищують рекомендовані для протизапальної дії, не впливали на екскрецію води, електролітів та креатиніну протягом усього періоду спостереження. Після одноразового перорального застосування мелоксикаму в дозі 0,3 та 1,5 мг/кг максимальна концентрація препарату в плазмі досягалася через 6-8 годин та становила 0,14 та 3,0 мкг/мл відповідно, знижуючись до невизначеного рівня за 24 години. При п'ятиденному застосуванні препарату кумуляції його не спостерігали для досягнення необхідної терапевтичної концентрації при застосуванні один раз на день необхідні дози, що перевищують 0,3 мг/кг. Кроликам препарат можна давати з квітковим медом для довгострокової аналгезії при хворобливих станах, таких як артрит або спондильоз у дозі 0,1-0,2 мг/кг кожні 12 годин.

Carpenter J. W. еt al. (2009), вивчаючи фармакокінетику мелоксикаму у кроликів, встановили, що достатньо перорального застосування препарату в дозі 0,2-0,3 мг/кг один раз на день, та не виявили побічних ефектів, застосовуючи його протягом 10 днів. Максимальна концентрація препарату в плазмі першого дня була 0,17 мкг/кг, на 10-й день – 0,24 мкг/кг. Крім того, Salhab A. S. et al. (2001) встановили, що мелоксикам у дозі 20 мг/кг інтраперитонеально інгібує овуляцію у кролиць при введенні через 2 і 5 годин після коїтусу.

НПЗЗ вибирають з урахуванням їх аналгетичної та протизапальної активності. Такі препарати, як флуніксин та карпрофен, забезпечують аналгетичну дію, порівнянну з опіоїдними аналгетиками. Leach M. C. еt al. (2009) вивчили вплив болю та стресу на поведінку кроликів після оваріогістеректомії та можливість застосування мелоксикаму у післяопераційний період. Встановили, що для достатньої аналгезії при пошкодженні м'яких тканин кроля необхідні великі дози препарату (початкова доза – 1 мг/кг, наступна – 0,5 мг/кг/день) або поєднання мелоксикаму з опіоїдними аналгетиками.
Cooper C. S. еt al. (2009) порівнювали вплив на апетит кроликів мелоксикаму та бупренорфіну протягом 7 днів після операції, кількість фекалій та сечі, вага тіла та рівень аналгезії та дійшли висновку, що мелоксикам є гарною альтернативою бупренорфіну та при його застосуванні ризик розвитку анорексії та шлунково-кишкового стаза мінімальний.

Для впевненості в адекватності анестезії можна використовувати одночасно опіоїдні анальгетики та НПЗЗ із мінімальною небезпекою побічних ефектів.
Коли кролика віддають зі стаціонару, власника інструктують необхідність уважно спостерігати за поведінкою вихованця, вживанням корму і виділенням твердого калу. Кролика необхідно привезти для повторного огляду, якщо він не їсть понад 24 години. Якщо власник кролика не впевнений, що кролик їсть або його апетит знижений, необхідно госпіталізувати тварину для подальшого спостереження. Кролик, який не починає їсти після операції, потребує лікування для профілактики або усунення шлунково-кишкового стазу та перегляду призначень на післяопераційний період.

Література

перелік

1. Пламб, Дональд К. Фармакологічні препарати у ветеринарній медицині // М., 2002. - 856 с.
2. Aeschbacher, G. Rabbit anesthesia // Compendium on Continuing Education, 1995, 17, 1003-1011.
3. Carpenter J. W., Pollock C. G., Koch D. E., Hunter R. P. Single і multi-dose фармакокінетиків з meloxicam після орального застосування до rabbit (Oryctolagus cuniculus) // J Zoo Wildl Med. 2009 Dec; 40 (4): 601-6.
4. Cooper C. S., Metcalf-Pate K. A., Barat C. E., Cook J. A., Scorpio D. G. Comparison of side effects між buprenorphine і meloxicam використовували postoperatively в Dutch belted rabbits (Aryctolagus cuniculus) // J. 2009 р. May; 48 (3): 279-85.
5. Elmas M., Yazar E., Uney K., Er Karabacak A., Traş B. Pharmacokinetics of enrofloxacin і flunixin меглюміни та взаємодії між латинськими руками після нескінченної co-administration в медичних і ендотоксикаційних rabbits // Vet J. 20 177 (3): 418-24. Epub 2007 Jul 17.
6. Fujibayashi K., Sakamoto K., Watanabe M., Iizuka Y. Pharmacological properties of R-84760, a novel kappa-opioid receptor agonist // Eur J Pharmacol. 1994 Aug 11; 261 (1-2): 133-40.
7. Flecknell P. A. Relief of pain in laboratory animals // Lab Anim., 1984; 18, 147-160.
8. Flecknell P. A. Analgesia in small mammals // Sem Avian Exotic Pet Med., 1998; 7, 41-47.
9. Flecknell P. A., Liles J. H., Wootton R. Reversal of fentanyl/fluanisone neuroleptanalgesia в rabbit using mixed agonist/antagonist opioids // Lab Anim. 1989 Apr; 23 (2): 147-55.
10. Green C. J. Neuroleptanalgesic drug combinations в anaesthetic management of male laboratory animals // Lab Anim., 1975; 9, 161-178.
11. Hawkins M. G., Taylor I. T., Craigmill A. L., Tell L. A. Enantioselective фармакокінетиків з різьбленого карпрофена в Новій Зеландії білих судин // J Vet Pharmacol Ther. 2008 Oct; 31 (5): 423-30.
12. Hayashida M., Fukunaga A., Fukuda K., Yamazaki S. Y., Arita H., Hanaoka K. A rabbit model для випробування простих anesthesia and analgesia: characterization and validation with isoflurane anesthesia and fentanyl analgesia // J Anesth. 2004; 18 (4): 282-91.
13. Hubbell J. A., Muir W. W. Evaluation of survey of diplomates of American College of Laboratory Animal Medicine on use analgesic agents in animals used in biomedical research // J Am Vet Med Assoc. 1996 Sep 1; 209 (5): 918-21.
14. Jenkins W. L. Pharmacologic aspects analgesic drugs in animals: an overview // J Am Vet Med Assoc., 1987; 191, 1231-1240.
15. Karachalios T., Boursinos L., Poultsides L., Khaldi L., Malizos K. N. Діяльність шорсткого терміну управління низьким терапієчним артеріями анти-COX-2 agents on healing of fracture // An experimental study in rabbits. J Bone Joint Surg Br. 2007 Sep; 89 (9): 1253-60.
16. Leach M.C., Allweiler S., Richardson C., Roughan J.V., Narbe R., Flecknell P.A. 2009 Oct; 87 (2): 336-47. Epub 2009 Бер 19.
17. Lintz W., Erlaçin S., Frankus E., Uragg H. Biotransformation tramadol в людей і animal Arzneimittelforschung. 1981; 31 (11): 1932-43.
18. Miyazaki Y., Horii Y., Ikenaga N., Shimoda M., Kokue E. Можливий активний транспортний механізм в фармакокінетиках flunixin-meglumine in rabbits // J Vet Med Sci. 2001 Aug; 63 (8): 885-8.
19. Ohya M., Taguchi H., Mima M., Koumoto K., Fukae T., Uchida M. Ефекти з morphine, buprenorphine і butorphanol на повітрі dynamics of rabbit // Masui. 1993 Apr; 42 (4): 498-503.
20. Osterloh G., Friderichs E., Felgenhauer F., Günzler W. A., Henmi Z., Kitano T., Nakamura M., Hayashi H., Ishii I. Головні фармакологіческіе дослідження на tramadol, а також аналітичний agent Arzneimittelforschung. 1978; 28(1a): 135-51.
21. Portnoy L. G., Hustead D. R. Pharmacokinetics butorphanol tartrate in rabbits // Am J Vet Res., 1992; 53, 541.
22. Richardson V. C. G. Rabbits Health, Husbandry and Diseases. Blackwell Science Ltd, 2000. - 178р.
23. Salhab A. S., Gharaibeh M. N., Shomaf M. S., Amro B. I. Meloxicam inhibits rabbit ovulation // Contraception. 2001 р. Jun; 63 (6): 329-33.
24. Small Animal Clinical Pharmacology / Jill Maddison et al. - Elsevier Limited, 2008. - 589 p.
25. Stephen J. Birchard, Robert G. Sherding - Saunders Manual of Small Animal Practice, Third Edition, 2005. - 2008 p.
26. Souza M. J., Greenacre C. B., Cox S. K. Pharmacokinetics orally administered tramadol в домашніх rabbits (Oryctolagus cuniculus). Am J Vet Res. 2008 Aug; 69(8): 979-82
27. Turner P. V., Chen H. C., Taylor W. M. Pharmacokinetics meloxicam в rabbits після одного і повторного oral dosing // Comp Med. 2006 Feb; 56 (1): 63-7.
28. Turner P. V., Kerr C. L., Healy A. J., Taylor W. M. Діяльність meloxicam і butorphanol на мінімальну величезну концентрацію isoflurane в rabbits // Am J Vet Res. 2006 р. May; 67 (5): 770-4.
29. Wixson S. K. Anesthesia and analgesia. У Бібліотеці laboratory Rabbit, Academic Press, 2nd edn. 1994 (P. J. Manning and D. H. Ringler, eds). pp 87–109.

Кастрація – вирішення проблеми плідності кроликів. Кому невідомий розхожий вислів «плодяться, як кролики»! Ця тварина стала практично символом плодючості, про що, звичайно, повинні не забувати і господарі декоративних вухань, заводячи у себе декоративний варіант домашніх вихованців.

Щоб уникнути багатьох небажаних явищ, фахівці рекомендують вчасно стерилізувати чи каструвати їх. Чим це загрожує чи, навпаки, не загрожує кролику і чи потрібно це робити?

Цю операцію можна піддати і самку, і самця. У першому випадку кролицям перев'язують маточні труби, штучно створюючи їх непрохідність, а кроликам «чоловічої статі» – насіннєві протоки або видаляють їх фрагмент.

Тобто за великим рахунком грубого втручання в кролячий організм не відбувається: статеві органи не видалені, працюють,як кажуть, у штатному режимі, продовжуючи виробляти гормони. Статевий інстинкт у особин не порушується, не знижується, вони здатні спарюватись. Але мета самої процедури – не дозволити кроликам безконтрольно розмножуватися – досягнуто.

Після стерилізації вихованець може схуднути або стати агресивним. Чи може стерилізація якось вплинути на кролячий організм? Через природну потребу в продовженні роду, та ще при нормально функціонуючій статевій системі, стерилізовані кролики зазнають великого гормонального збою.

Організм тварини піддається стресу, наслідком якого можуть стати серйозні порушення здоров'я, зокрема проблеми з сечостатевою системою. Бідний вихованець може як би без видимих ​​причинсхуднути, відмовлятися від їжі, у його поведінці з'являються елементи агресії навіть по відношенню до господарів.

Кастрація: за та проти

Під кастрацією мається на увазі операція з повного видалення органів розмноження,тобто. внаслідок її кролиці позбавляються яєчників (часткова кастрація) або їх же з маткою разом (повна), а у самців видаляються обидва яєчка.

Якщо стерилізація усуває лише функцію розмноження з усіма звідси гормональними наслідками, то кастрація гормональних проблем у кролячому організмі не створює.

Мінуси

Треба визнати, що таке хірургічне втручанняпри безлічі плюсів, про які поговоримо нижче, має деякі малоприємні моменти:

• як і будь-яка операція, це травмування та стрес(як для вихованця, так і для господаря);
• грошові витрати;
• додатковий догляд.

Плюси

Незважаючи на деякі проти, фахівці, відповідаючи на запитання «чи обов'язково каструвати декоративних кроликів?», стверджують, що для вухань обох статей кастрація є найкращим виходом.За – дуже багато аргументів:

У якому віці робити

Нерідко трапляється, що кастрація має бути проведена вже немолодому пухнастику за станом здоров'я. Однак ветеринари вважають, що краще це зробити, коли кролик ще молодий, здоровий і енергійний.

Стерилізацію слід проводити, коли вихованцю виповниться півроку. Крольчиха досягає статевозрілого віку близько 4-х місяців від народження,і, в принципі, операція вже можлива. Проте безпечнішим вважається 6-місячний вік.

Показник для самців - опущення яєчок у мошонку. Це теж відбувається приблизно у тому віці – 3,5-4 місяці.

Раніше робити таку операцію не варто: мало того, що це технічно складніше, ще й непередбачувано для здоров'я кролика.

Не візьметься «лікар Айболіт» і за кастрацію старого кролика. За статистикою, ймовірність неблагополучного результату операції із віком увеличивается.І навіть пацієнта, який перевалив дворічний віковий рубіж, вже слід ретельно обстежити з проведенням аналізів.

Якщо кролику більше 4-х років, то ймовірність його загибелі значно вища, ніж у 6-9-місячного побратима.

Коли ще не можна?

Якщо домашній вихованець перебирає з вагою, операцію з кастрації йому проводити не стануть- Поки не ввійде в норму.

Так само надійдуть і за наявності якихось захворювань – спочатку пухнастого пацієнта треба вилікувати.

Як відбувається операція

Наркоз. Операційні процедури для самців та самок відрізняються. У кроликів повністю видаляють сім'яники. Це можна зробити, зробивши один або два надрізи.

У першому варіанті через надріз видаляються обидва насінники, у другому - надрізи робляться над кожним з них, і органи видаляються окремо. Проходить все це під місцевою анестезією.

Розрізи, оброблені антисептиком, можуть бути відкритими. "Закритий" варіант передбачає накладання швів або нанесення хірургічного клею.

Операція у самки складніша.У кролиці видаляють всі дітородні органи, і проведення такого втручання вимагає застосування наркозу. Після видалення вшивають і кровоносні судини, які ці органи живили, і накладають шви, що закривають розріз.

Якщо вас хвилює якість і вплив наркозу на оперовану вихованку, треба заздалегідь «провести моніторинг» ветеринарних лікарень, вивчити відгуки господарів, які зіткнулися з такою проблемою, і вибрати фахівця, який вже має багатий досвід лікування, у тому числі хірургічного, декоративних кроликів.

Операція: до та після

Перед відповідальним моментом слід уточнити у клініці:

• чому буде підданий ваш улюбленець – стерилізації чи кастрації;
• які аналізи необхідно зробити додатково;
• які медикаментозні препарати або пристрої можуть знадобитися в післяопераційний період;
• як підготувати кролика до операції

Не варто тримати вихованця півдоби на «голодній дієті». Для тварини, що постійно жує, це стрес. Потрібно просто зменшити звичайну дозу.

…Але всі необхідні маніпуляції щодо запобігання кролячому «демографічного вибуху» завершено, і тепер настає відповідальний період – післяопераційний догляд. Про те, як його здійснювати, треба обов'язково з'ясувати ще у ветеринарній клініці.

Обов'язково поцікавтеся у лікаря, якої поведінки можна очікувати від прооперованого кролика, щоб не лякатися «ненормальностей»; як має виглядати місце розрізу та післяопераційний шов; як їх опрацьовувати.

Треба бути готовим до того, що в перші післяопераційні години кролика похитуватиме, і поводитися він може дуже незвично.

Помістити його треба на чисту житлову площу та забезпечити комфорт, спокій та питво. Лоток теж має бути чистим і заповнений свіжим наповнювачем (як варіант – клаптиками паперу – цілком нейтральний матеріал).

Їжу можна запропонувати за кілька годин, але не давати об'їдатися хоча б у перші три дні.

Проконсультуйтеся у лікаря як доглядати улюбленця після операції. Спостерігайте як за апетитом, так і за сечовипусканням та випорожненням.Якщо раптом помітили, що він не їсть, що вже довго не мочиться, або у нього немає стільця, або, навпаки, має місце пронос, це привід звернутися до фахівця.

Проопероване місце слід періодично обстежити. Шов має бути сухим, чистим.У кролика нерідко виникає бажання погризти шви – треба якимось чином убезпечити їх, незважаючи на активне неприйняття вихованцем усіляких захисних бандажів та комірів.

Якщо шов почувається нормально, його не треба нічим обробляти. А ось знеболювальне кролику, а особливо кролиці, аж ніяк не завадило б. Біль може уповільнити післяопераційну реабілітацію тварини, заважаючи як її харчування, і особистої гігієні.

Незважаючи на те, що через пару днів кролик вимагатиме активного руху по кімнаті, поки не дозволяйте йому цього: може бути зачеплене та травмоване місце розрізу.

Нехай вас не турбує, якщо помітите припухлість мошонки. Якщо це спостерігається не більше двох тижнів, вважається нормою.

Після кастрації кроликів не можна поселяти разом із кролицями«дітородного» віку. Справа в тому, що у прооперованого самця сперма, що залишилася в сім'явивідних протоках, ще довго зберігає свої властивості, а рівень тестостерону не відразу знизиться до «нуля», тому кролик ще протягом 3-4 тижнів буде робити спроби спарювання, і кролиця може завагітніти .

Ціна запитання

Операція зі стерилізації чи кастрації, звичайно, процедура платна. Те, скільки вона коштує, відрізняється у різних містах і навіть у різних клініках. У приватних ветустанов ціна, як правило, вище, ніж у державних.

Каструвати самця дешевше, ніж самку.Це ще може залежати від породи вухастика. Нерідко вона дорівнює чи перевищує ціну самого «пацієнта». Вартість тільки власне хірургічної маніпуляції починається від 2000 рублів. Треба додати ще ціну анестезії, витратних матеріалів, медикаментів, крапельниці, а також додаткових досліджень – УЗД, аналізів, ехо- та електрокардіограми. Не виключено, що доведеться на якийсь час залишити домашнього улюбленця в стінах клініки.

Не слід скидати з рахунків і такі статті витрат як транспортування туди-назад, попередня консультація ветеринара та його підсумковий огляд, а також купівля захисних пристроїв (бандажа/коміра).

Якщо ви щасливий володар пари-трійки декоративних кроликів, то щоб уникнути проблеми кролячого перенаселення повинні заздалегідь неодмінно вирішити для себе, як вчинити зі статевими інтересами своїх вихованців і який з виходів вам здасться більш гуманним - стерилізація або кастрація, вивчивши поради та відгуки фахівців та колег з хобі.

Вконтакте

УДК 619:636.92:615.211

Ін'єкційні препарати та їх поєднання, що використовуються для анестезії кроликів

Ін'єкційні препаративикористовують для введення кроликів в анестезію при проведенні різних діагностичних та лікувальних процедур. Їх застосування можливе як самостійно, так і перед інгаляційними препаратами. Для ін'єкційної анестезії, на відміну від інгаляційної, не потрібно спеціального обладнання, тому багато ветеринарних лікарів змушені використовувати цей метод. В даний час найчастіше використовуються різні поєднання препаратів для ін'єкційної та інгаляційної анестезії.

Накопичений досвід свідчить, що багато засобів, що застосовуються для седації, анестезії та аналгезії, можна використовувати і для кроликів, але ефективні та безпечні дози препаратів, їх фармакодинаміка, застосування комбінацій препаратів має значні особливості. Нижче описуються деякі препарати та їх поєднання, дія яких на організм кроликів вивчена та які можуть становити інтерес для ветеринарних лікарів у нашій країні.

Ацепромазин ( Acepromazine maleate) - похідне фенотіазину, що пригнічує вплив на центральну нервову систему. Це інгібітор допаміну, альфа-адренергічний блокатор із слабкою антимускариновою активністю. Основним при використанні ацепромазину у ветеринарії є його транквілізуючий ефект, до додаткових відносять протиаритмічний ефект і спазмолітичну дію. Він зазвичай використовується для премедикації у тварин багатьох видів. Ацепромазин має гіпотензивну дію і не має аналгетичної активності. Доза для кроликів як транквілізатор 1 мг/кг в/м, ефект повинен наступити протягом 10 хвилин і тривати 1-2 години . Ghaffari MS et al., (2009) встановили, що ацепромазин у звичайній дозі зменшує у кроликів продукцію слізної рідини. . У кролів ацепромазин можна використовувати для премедикації перед застосуванням газового наркозу. Його можна застосовувати у комбінації з буторфанолом для кращого седативного ефекту.

Ксілазін(Xylazine) - є антагоністом альфа 2 -адренорецепторів, має у кроликів помірний седативний і незначний аналгетичний ефект. Викликає релаксацію скелетної мускулатури у вигляді центральної дії. Раніше його використовували як монопрепарат або у комбінації з кетаміном. Ця комбінація викликає пригнічення дихання та серцево-судинної системи, а у високих дозах – серцеву аритмію та високу смертність кроликів. Атипамезол - альфа-адренергічний блокатор - можна використовувати як антагоніст, для припинення дії ксилазину.

Медетомідін(Medetomidine (Domitor, Pfizer) - більш специфічний альфа 2 агоніст, ніж ксилазин, з меншою кількістю побічних ефектів. Він значно дорожчий і для кроликів потрібні більші дози, ніж для тварин інших видів. Медетомідин можна використовувати для премедикації або у поєднанні з кетаміном для хірургічного наркозу Медетомідин викликає звуження периферичних судин, змінюючи кровопостачання слизових оболонок, так що помилково можна визначити, що у тварини ціаноз При використанні медетомідину часто розвивається гіпоксія, так що весь період анестезії необхідно застосування кисню.

Вазоконстрикція, що викликається медетомідином, може перешкоджати роботі пульсоксиметра і венепункції для взяття крові і проведення інфузійної терапії. Цей препарат викликає гарне розслаблення гортані, що полегшує ендотрахеальну інтубацію. Він не викликає пригнічення дихання та відновлення зазвичай відбувається протягом трьох годин. Відновлення можна прискорити застосуванням атипамізолу.

Буторфанол(Butorphanol) – синтетичний антагоніст-агоніст опіатних рецепторів. Аналгетичний ефект у 3-5 разів перевищує дію морфіну у людини і більш ніж у 30 разів у щурів. У кролів буторфанол викликає аналгезію та легку седацію, не викликає пригнічення дихання, якщо не використовувати високі дози. . Застосовують для зняття післяопераційного болю у дозі 0,4 мг/кг перорально кожні 4-6 годин. У кількох дослідженнях було доведено, що використання високих доз буторфанолу викликає менший аналгетичний ефект, ніж нижчі. Період напіввиведення буторфанолу у кроликів у дозі 0,5 мг/кг становить 1,64 годин після внутрішньовенного застосування і 3,16 годин після підшкірного. Буторфанол можна використовувати для усунення гнітючого впливу на дихання µ-агоністів, таких як фентаніл, морфін і пефідин. Буторфанол (0,05 мг/кг підшкірно або внутрішньом'язово) використовують у комбінації з медетомідином та кетаміном для хірургічного наркозу. Його також можна використовувати у комбінації з ацепромазином для седації . Це поєднання викликає вазодилятацію, що полегшує взяття крові та внутрішньовенні ін'єкції.

Пропофол(Propofol) є гіпнотичним препаратом короткої дії, що не має схожості з препаратами для загальної анестезії, механізм дії не ясний. . Як препарат, що використовується для введення в анестезію, він має багато переваг, включаючи глибокий гіпнотичний вплив та терапевтичну широту, швидкий початок дії та швидке відновлення. Повторні дози не накопичуються і пропофол можна використовувати для підтримки анестезії тривалою інфузією. Baumgartner CM та ін. (2009) з цією метою застосовували пропофол у дозі 4,0-8,0 мг/кг внутрішньовенно, для підтримки анестезії 1,2-1,3 мг/кг/хв. . Доза 5-14 мг/кг дає достатньо часу досвідченому анестезіологу щодо інтубації . Після введення можливе короткочасне апное, а при застосуванні високих доз зупинка дихання.

Дослідження Dikmen B. та ін. (2010) показали, що використання пропофолу краще, ніж кетаміну у тварин з нирковою недостатністю . Zhu T та ін. (2008) встановили, що пропофол посилює печінковий кровотік . За даними Fudickar A. та ін. (2009) введення пропофолу викликає такі негативні наслідки, як гостру брадикардію, асистолію, гіперліпемію та метаболічний ацидоз, рабдоміоліз та міоглобінурію, які описують як Propofol infusion syndrome (PRIS). Пропофол не рекомендується для тривалої анестезії кроликів. Досліди Chen WH et al. (2006) пропофол чинив прямий вплив на серце кроликів, викликаючи різке зниження артеріального тиску та брадикардію.

Кетамін(Ketamine) - дисоціативний препарат, який використовують як єдиний для введення в наркоз або комбінації з іншими препаратами для введення в наркоз і його підтримки. Кетамін викликає симпатоміметичний ефект, що полягає у збільшенні частоти серцевих скорочень, серцевого викиду та кров'яного тиску. Внутрішньом'язове введення кетаміну в дозі 40 мг/кг через 6,0±0,5 хвилин викликало у кроликів анестезію тривалістю 36,0+/-0,9 хвилин. Попереднє внутрішньом'язове введення вітаміну С у дозі 30, 60 та 240 мг/кг скорочувало час введення в наркоз і продовжувало анестезію до 5,0+/-0,06 та 37,0+/-0,7; 4,0 +/- 0,5 та 39,0 +/- 0,6; 2,0 +/- 2,3 та 44,0 +/- 0,8 хвилин відповідно .

Дослідження показали, що застосування кетаміну в дозі 10 мг/кг внутрішньовенно у кроликів із травмою спинного мозку захищає його від ішемії та перешкоджає зниженню рівня антиоксидантів. .

Кетамін не усуває окулярний, ларингеальний та ковтальний рефлекси. Погане м'язове розслаблення робить кетамін непридатним для застосування як монопрепарат для анестезії перед хірургічними операціями, його застосовують у комбінації з ксилазином або іншими препаратами. Комбінації кетамін/діазепам та кетамін/ацепромазин збільшують у кроликів внутрішньоочний тиск.

Тилетамін/золазепам(tiletamine/zolazepame) – тилетамін – ін'єкційний анестетик, хімічно подібний з кетаміном, золазепам – слабкий діазепіновий транквілізатор. Фармакологічна дія комбінованого препарату подібна до кетаміну та діазепаму. Придатність тилетаміну/золазепаму для анестезії кроликів вивчали Brammer DW et al. (1991). Внутрішньом'язове введення 32 та 64 мг/кг препарату не викликало анестезії та призвело до нефротоксичного ефекту з розвитком ниркової недостатності протягом 5 днів. Дослідники дійшли висновку, що цей препарат протипоказаний кроликам . Нефротоксичність тилетаміну/золазепаму для кроликів встановлена ​​і в дослідженні Doerning BJ. та ін. (1992). Дані про нездатність тилетаміну/золазепаму викликати анестезію кроликів отримані Dupras J. et al. (2001) . У той же час необхідно враховувати неможливість легального використання багатьох препаратів, що застосовуються у всьому світі, в нашій країні. Якщо ветеринарна клініка не обладнана апаратурою для використання інгаляційної анестезії, і не має дозволу на використання кетаміну, одним із небагатьох препаратів вибору в такому випадку залишається тилетамін/золазепам, який необхідно комбінувати з іншими лікарськими засобами.

Кетамін та ксилазин.

При мінімально інвазивних процедурах тривалістю не більше 30-40 хвилин, кетамін у дозі 35 мг/кг у суміші з ксилазином 5 мг/кг вводять внутрішньом'язово або підшкірно. . Після введення в наркоз кролика можна інтубувати і, при необхідності, підключити до апарату штучного дихання. Підтримка анестезії до 3 годин забезпечується внутрішньовенним введенням суміші кетамін/ксилазин (10+2 мг/кг).

Кетамін, ксилазин та ацепромазин.

Hobbs BA. та ін. (1991) встановили, що комбінація кетамін/ксилазин з ацепромазином краще, якщо необхідна тривала операція, в їх дослідженні період анестезії становив 60-120 хвилин. Але ця комбінація при внутрішньом'язовому введенні викликала периневральне запалення та фіброз у 4 кроликів з 6 у дослідженні, проведеному в 1999 Vachon P. .

Медетомідин та кетамін.

Суміш медетомідин/кетамін у дозі 0,35 мг/кг + 5 мг/кг при внутрішньовенному введенні забезпечує хірургічний наркоз тривалістю не менше 35 хвилин. Внутрішньовенне введення атипамезолу припиняє дію цих препаратів. Проведені на кроликах дослідження (Kim MS et al. 2004) показали, що оптимальними для реверсії наркозу є рівна або подвійна доза атипамізолу .

Кетамін, медетомідин та ізофлюран.

Кетамін у дозі 15 мг/кг та медетомідин 0,25-0,5 мг/кг підшкірно або внутрішньом'язово у поєднанні з ізофлюраном 1,5-2,0% забезпечують достатній ступінь наркозу для проведення орхіектомії та оваріоектомії. Підшкірна ін'єкція переноситься легше, але після внутрішньом'язового введення індукція в анестезію відбувається швидше. Атипамезол є ефективним антагоністом у дозі 0,5-1,0 мг/кг, швидше діє при внутрішньом'язовому введенні порівняно з підшкірним прискорює відновлення кролика.

Кетамін та ксилазин з буторфанолом.

У дослідженні Marini RP та ін. (1992) кетамін/ксилазин у дозі 35 мг/кг+5 мг/кг застосовували разом із буторфанолом 0,1 мг/кг. Включення до цієї комбінації буторфанолу продовжувало анестезію в 1,4-1,6 рази з 77 до 99 хв. .

Медетомідин, кетамін та буторфанол з ізофлюраном.

Поєднання медетомідину, кетаміну та буторфанолу використовують для нетривалих процедур, таких як підрізування різців або рентгенографія. Його також можна використовувати для введення в анестезію перед застосуванням інгаляційної анестезії при триваліших процедурах, таких як обробка корінних зубів, видалення різців, в цих випадках необхідна інтубація, оскільки використання лицьової маски неможливо. Інгаляційну анестезію рекомендуємо також при промиванні слізного каналу.

Медетомідин у дозі 0,2 мг/кг у поєднанні з 10 мг/кг кетаміну та 0,5 мг/кг буторфанолу вводять підшкірно. Це становить 0,2 мл/кг Domitor (Pfizer), 0,1 мл/кг кетаміну та 0,05 мл/кг Torbugesic (Fort Dodge). Ін'єкція зазвичай переноситься болісно, ​​дія препаратів починається через 5-10 хвилин і продовжується приблизно 20 хвилин. Повне відновлення відбувається за 2-4 години.

В кінці операції, дія медетомідину можна зняти атипамезолом 1 мг/кг (0,1 мл/кг) (Antisedan (Pfizer). Період дії атипамезолу становить 15-40 хвилин. Анальгетична дія медетомідину також знімається атипамезолом. Якщо не вводити атипемезол, відновлення анестезії відбувається через 1-2 години.

Тилетамін/золазепам та ксилазин.

Dupras J. та ін. (2001) вивчили можливість використання комбінації тилетамін/золазепаму у дозі 20 мг/кг у поєднанні з ксилазином 3 мг/кг. при внутрішньом'язовому введенні. Введення в анестезію тривало близько 3 хв, тривалість анестезії склала в середньому 109,4 хв. У зв'язку зі здатністю ксилазину викликати суттєву гіпоксію, дослідники вказують на обов'язкове забезпечення кролика киснем.

Разіна А.В та ін. (2010) рекомендують внутрішньом'язове ведення рометара в дозі 4,0-6,0 мг/кг з наступним (через 20 хв) внутрішньом'язовому введенні тилетамін/золазепаму в дозі 5-10 мг/кг. Через 5 хв. Після внутрішньом'язового введення золетилу наступала повна релаксація м'язів, були відсутні корнеальний рефлекс і больова чутливість, зіниця розширювалася. Анестезія тривала близько 30 хв, через 1,5 години кролик пересувався самостійно.

Таблиця -Препарати та їх поєднання, рекомендовані для седації та анестезії кроликів

Препарати	Доза (мг/кг)	Дія	Спосіб застосування	Тривалість дії
ацепромазин		седація, що не викликає аналгезію
ацепромазин + буторфанол		седація та аналгезія
буторфанол + медетомідин + кетамін		анестезія		20-30 хвилин, відновлення 1-4 години
кетамін + ксилазин		анестезія		30-40 хвилин, відновлення 1-2 години
кетамін + ксилазин + буторфанол		анестезія		40-60 хвилин відновлення 1-2 години
кетамін + ксилазин + ацепромазин		анестезія		25-40 хвилин, відновлення 1-2 години
кетамін + ацепромазин		анестезія
кетамін + медетомідин		анестезія		не менше 35 хвилин
пропофол		гіпнотичне		для підтримки анестезії 1,2-1,3 мг/кг/хв.
ацепромазин + буторфанол + пропофол		седація та аналгезія		для підтримки анестезії пропофол 1,2-1,3 мг/кг/хв.
тилетамін/золазепам + ксилазин		анестезія
ксилазин + тилетамін/золазепам		анестезія		30 хв, відновлення 1,5 години

Таким чином, існуючі в даний час препарати та можливість їх використання в різних поєднаннях дозволяють, у більшості випадків, вибрати метод анестезії відповідно до стану кролика, характеру та тривалості запланованої операції. При цьому значну роль відіграє обладнання ветеринарної клініки та досвід лікаря.

Кандидат ветеринарних наук, доцент кафедри хвороб птахів, риб, бджіл та хутрових звірів ФБГОУ «Санкт-Петербурзька державна академія ветеринарної медицини», Центр ветеринарної медицини “Ветус”.

Література
	Пламб, Дональд К. Фармакологічні препарати у ветеринарній медицині // М., 2002. - 856 с.
	Разіна А.В. Оптимізація методу загальної анестезії на кроликах/О.В. Разіна, А.І. Фролова, М.А. Сергєєва // Актуальні питанняветеринарної біології.- 2005.- №1(5).-С.32-35
	Baumgartner CM, Koenighaus H, Ebner JK, Henke J, Schuster T, Erhardt WD. Кардіоvascular ефекти fentanyl і propofol на hemodynamic функцію в rabbits // Am J Vet Res. 2009 Mar;70(3):409-17.
	Brammer DW, Doerning BJ, Chrisp CE, Rush HG. Анестетичні та непрототоксичні ефекти Telazol в Новій Зеландії білих rabbits // Lab Anim Sci. 1991 Oct; 41 (5): 432-5.
	Cooper, J.E. Anaesthesia of exotic species. У Manual of Aneasthesia for Small Animal Practice // (A.D.R. Hilbery, ed.). British Small Animal Veterinary Association. 1989. – 144 р. н.
	Chang C, Uchiyama A, Ma L, Mashimo T, Fujino Y. Спосіб впливу на респіраторний карбон диоксиду репліки, артеріальний кровообіг, і короткий ритм декмедетомідіна, propofol, і мідазолам в sevoflurane-anesthetized rabbits // Anes 2009 Jul;109(1):84-9.
	Chen WH, Lee CY, Hung KC, Yeh FC, Tseng CC, Shiau JM. Direct cardiac ефект propofol on intact isolated rabbit heart // Acta Anaesthesiol Taiwan. 2006 Mar; 44 (1): 19-23.
	Cruz FS, CarregaroAB, Raiser AG, Zimmerman M. Total intravenous anesthesia with propofol and S(+)-ketamine in rabbits // Vet Anaesth Analg. 2010 Mar;37(2):116-22.
	Dikmen B, Yagmurdur H, Akgul T, Astarci M, Ustun H, Germiyanoglu C. Preventive effects propofol and ketamine on renal injury in unilateral ureteral obstruction // J Anesth. 2010 Feb;24(1):73-80.
	Doerning BJ, Brammer DW, Chrisp CE et al. 42 (3): 267-269.
	Dupras J, Vachon P, Cuvelliez S, Blais D. Anestesia of New Zealand rabbit з використанням комбінації tiletamine-zolazepam і кетамін-midazolam з або без xylazine // Can Vet J. 2001 Jun;42(6):455- 60.
	Elsa A, Ubandawaki S. Ketamine anaesthesia досліджує премедікування rabbits with vitamin C // J Vet Sci. 2005 Sep;6(3):239-41.
	Flecknell, P.A. The relief of pain in laboratory animals // Lab Anim., 1984; 18, 147-160.
	Flecknell, P.A. Anaesthesia // In Manual of Rabbit Medicine and Surgery. 2000; (P.A. Flecknell, ed.) pp 103-116.
	Flecknell, P.A., John, M., Mitchell, M. et al. Neuroleptanalgesia in the rabbit // Lab Anim., 1983; 17, 104-109.
	Fudickar A, Bein B. Propofol infusion syndrome: update of clinic manifestation and pathophysiology // Minerva Anestesiol. 2009 May;75(5):339-44.).
	Ghaffari MS, Moghaddassi AP, Bokaie S. Діяльність інтрамускулярного acepromazine і diazepam на tear production в rabbits // Vet Rec. 2009 Jan 31;164(5):147-8.
	Ghaffari MS, Moghaddassi AP. Діяльність кетаміну-диазепаму і кетаміну-acepromazine комбінацій на внутрішньовічних pressure в rabbits // Vet Anaesth Analg. 2010 May;37(3):269-72.
	Hellebrekers, LJ, de Boer, EJ, van Zuylen, M.A., Vosmeer H. A comparison між медетомідіне-кетаміном і медетомідіно-профофол анаесте- сія в rabbits // Lab Anim., 1997; 31, 58-69.
	Hobbs BA, Rolhall TG, Sprenkel TL, Anthony KL. Comparison several combinations for anesthesia in rabbits // Am J Vet Res. 1991 May; 52 (5): 669-74.
	Kim MS, Jeong SM, JH Park, Nam TC, Seo KM. Reversal of medetomidine-ketamine combination anesthesia in rabbits by atipamezole // Exp Anim. 2004 Oct;53(5):423-8.
	Marini RP, Avison DL, Corning BF, Lipman NS. Ketamine/xylazine/butorphanol: як нова anestetická комбінація для rabbits // Lab Anim Sci. 1992 Feb; 42 (1): 57-62.
	Martinez MA, Murison PJ, Love E. Induction anaesthesia з ним midazolam або propofol в rabbits premedicated with fentanyl/fluanisone // Vet Rec. 2009 Jun 27; 164 (26): 803-6.
	Mason D.E. Анестесія, аналгесія, і седація для малих матусь // В Ferrets, Rabbits and Rodents, Clinical Medicine and Surgery. (E.V. Hillyer, K.E. Quesenberry, eds). 1997. – pp 378-391.
	Murphi KL, Roughan JV, Baxter MG, Flecknell PA. Anaesthesia з комбінацією кетаміну і медетомідіна в rabbit: ефект медичного застосування з buprenorphine // Vet Anaesth Analg. 2010 May;37(3):222-9. Epub 2010 Бер 10.
	Ohya M, Taguchi H, Mima M, Koumoto K, Fukae T, Uchida M. Ефекти з morphine, buprenorphine і butorphanol на власному dynamics of rabbit // Masui. 1993 Apr;42(4):498-503.
	Orr HE, Roughan JV, Flecknell PA. Assessment of ketamine and medetomidine anaesthesia в домашній rabbit // Vet Anaesth Analg. 2005 Sep;32(5):271-9.
	Portnoy, L.G., Hustead, D.R. Pharmacokinetics of butorphanol tartrate in rabbits // Am J Vet Res., 1992; 53, 541.
	Stephen J. Birchard, Robert G. Sherding - Saunders Manual of Small Animal Practice, Third Edition, 2005. - 2008 p.
	Vachon P. Self mutilation в rabbits дотримуючись intramuscular ketamine-xylazine-acepromazine injections // Can Vet J. 1999 Aug;40(8):581-2.
	Wixson, S.K. Anesthesia і analgesia. У Бібліотеці laboratory Rabbit, Academic Press, 2nd edn. 1994 (P.J. Manning and D.H. Ringler, eds). pp 87-109.
	Yershov AL, Jordan BS, Fudge JM, Dubick MA. Включення режиму вентиляції на кетаміні/ксилазинних вимогах в rabbits // Vet Anaesth Analg. 2007 May;34(3):157-63.
	Yu QJ, Чжоу QS, Huang HB, Wang YL, Tian SF, Duan DM. Protective effect of ketamine on ischemic spinal cord injury in rabbits // Ann Vasc Surg. 2008 May-Jun;22(3):432-9.
	Zhu T, Pang Q, McCluskey SA, Luo C. Діяльність propofol on hepatic blood flow and oxygen balance in rabbits // Can J Anaesth. 2008 р. Jun;55(6):364-70.

Чому кроликів каструють чи стерилізують:
-Вважається, що кастровані та стерилізовані кролики мають більше міцним здоров'ям, а отже й живуть довше. Стерилізацією кролиць ви фактично усуваєте ризик отримання ракових захворювань репродуктивних органів самок. Кастрований самець ж проживе набагато довше і отримає менше каліцтв через те, що перестане намагатися битися з іншими домашніми тваринами (інші кролики, коти тощо).
—Кастровані та стерилізовані кролики більш доброзичливі та компанійські.Вони спокійніші, більш ласкаві, передбачувані. Крім того, кролі роблять куди менше поломок у будинку (менше гризуть меблі та риють нори в килимах), знижується агресія (спроби вкусити, подряпати, гарчати на господарів, вирватися і втекти). Після операції вони
-Перестають мітити. Після кастрації та стерилізації кролики, як самці, так і самки, перестають мітити територію і набагато легше привчаються ходити в туалет в одне місце, ніж раніше.
—Кастрація та стерилізація кроликів– це свого роду ваш внесок у контроль за народжуваністю тварин. Більше 15000 чудових домашніх тварин, таких як кішки, кролики, собаки щороку гинуть у нашій країні (в даному контексті США) від холоду та голоду, залишаючись своїми господарями напризволяще. Багато тварин гинуть від того, що їх випускають у лісопарки або просто на вулицю, де вони позбавлені їжі та гинуть від хвороб, а також є легкою здобиччю для інших тварин і чи гинуть перебігаючи дорогу. Зовсім не факт, що кроленята, яких ви здасте в зоомагазин знайдуть кращу частку. Т.к. вони будуть продані як товар першому покупцю, що потрапив, і ніхто не перевірятиме для якої мети купуються тварини. Багато кроленят підуть на корм зміям або будуть куплені як втіха для дитини, якій незабаром набридне.
—Кастровані та стерилізовані куди більш благодушно та грайливовідносяться до нових друзів. Кролики соціальні тварини і вона із задоволенням дружать з іншими кроликами. Але поки вони не стерилізовані, на жаль вони не можуть ставитися до іншого кролика як до друга, через сексуальні домагання (до протилежної статі) або агресії до кроликів тієї ж статі, що викликано гормонами.
—Операції з кастрації та стерилізації кроликів – безпечні.(за умови, якщо ви звернулися до досвідченого ветеринара). Асоціація домашніх кроликів www.rabbit.org стикалася з подібними операціями понад тисячу разів. Смертельні випадки становлять приблизно 0.1% від подібних операцій, основна причина – анестезія. Досвідчений ветеринар, який спеціалізується на кроликах, проведе таку операцію практично без ризику для здоров'я вашого вихованця. Не дозволяйте ветеринару з низьким стажем або великого досвіду, що не має досвіду, проводить подібні операції вашому вихованцю.
Чи справді операція безпечна для кроликів?
Подібна операція також є безпечною для кроликів, як і для інших тварин. На жаль, більшість ветеринарів не володіють технікою проведення безпечних операцій для кролів. Не дозвольте, недосвідченому ветеринар або ветеринару який не працював із кроликами проводити операцію вашими вихованцю. А також необхідно правильно доглядати кролика до і після операції.
У якому віці кроля можна проводити операцію?
Самкам можна проводити операцію після настання статевої зрілості в 4 місяці, але більшість ветеринарів вважають за краще дочекатися шестимісячного віку, так як для молодших кроликів операція може бути менш безлопатевою. Самців каструють починаючи з 3.5 місяців, як тільки у них опустяться яєчники, але більшість ветеринарів радять почекати до п'яти місяців.
З якого віку вже пізно проводити цю операцію?
Ветеринари вважають по-різному, але в одному їх думки сходяться: після шестирічного віку як наркоз, так і сама операція стають небезпечнішими для здоров'я. Ця ідея всього своєчасна, єдине, якщо ваш кролик старше двох років, варто зробити попереднє обстеження особливо серцево-судинної системи. Обстеження може обійтися вам набагато дорожче самої операції, але воно може виявити причини з яких операція могла бути більш небезпечною для вашого вихованця. Попередньо обстеження особливо важливе для вибору наркозу.
Як визначити, чи була стерилізована самка у попередніх господарів чи заводчика?
Велика ймовірність того, що самка була стерилізована. Можна поголити низ живота і подивитися, чи є там шрам. Проте сучасні технічні прийоми дозволяють ветеринарам проводити такі операції без шрамів. Є шанс, що ветеринар поставить тавро на животі, що свідчить про проведену операцію, але це малоймовірно. Тому єдиний спосіб це перевірити це ще одна операція.
Які питання мені варто поставити у ветеринарній клініці ветеринару?
Скільки господарів кроликів звертається до вас за рік?
Скільки операцій із кастрації/стерилізації кроликів цей ветеринар провів за останній рік?
Який відсоток успішних операцій? 90% успішних операцій - це занадто маленький відсоток для таких операцій. Будь-який лікар, ветеринар або людський, втрачає пацієнта випадково, як правило, через не діагностоване захворювання або недугу. Ветеринари по всій країні (США), що кастрували/стерилізували кроликів для House Rabbit Society, втратили життя менше 0,5% від загальної кількості прооперованих тварин. — Якщо були летальні випадки, то що стало причиною?
Чи видаляє лікар і яєчники, і матку? (ветеринар повинен видалити обидва органи)
Лікар робить «відкриту» чи «закриту» операцію з кастрації? (Закрита краще – дозвольте лікарю пояснити різницю).
Хірургічний прохід (entry) до яєць буде зроблений через мошонку або через черевну порожнину? (Прохід через черевну порожнину невиправдано підвищує травму кролика самця).
Чи вимагає ветеринар утримувати тварину від їжі та пиття до операції? (Краще цього не робити – кролика не може вирвати, тому цього не варто побоюватися під час операції, і не можна дозволяти, щоб у кролика повністю спустошувався травний тракт).
Які анестетики використовуватимуться? (Багато ветеринарів дуже успішно проводять операції з використанням іншого, ніж ізофлуран, анестетика. Але після них кролик буде як п'яний («hung over»), і, швидше за все, не зможе довгий час після операції є, що в свою чергу спричинить серйозні проблеми, якщо вчасно не зайнятися їх вирішенням.
Обговоріть з ветеринаром операційний та післяопераційний догляд. Дізнайтеся, як виявлятимуться можливі проблеми, як часто ветеринар чи його помічник зможе зайти відвідати вашого малюка? Чи будуть вони робити щось для встановлення можливих післяопераційних проблем? Який догляд буде наданий вашому вихованцю безпосередньо після операції: кисень, тепло, спокій ( собаки, що гавкають, і кішки, що нявкають, в сусідніх клітинах – не найкращий варіант). Що лікарі будуть робити для приведення кролика до тями?! Задавайте питання! Це приверне увагу ветеринара. Дайте йому зрозуміти, що ви стурбовані здоров'ям свого вихованця і суворо стежитимете за його діями.
Який до- та післяопераційний догляд слід надати кролику?
Давайте своєму кролику ацидофілін пару днів до операції, просто щоб бути впевненим, що у кролика все гаразд із травною системою.
У жодному разі не змінюйте його раціон.Після операції давайте також ацидофілін, доки апетит не прийде в норму.
Щодня перевіряйте шви.Після кастрації мошонка може бути заповнена рідиною. Теплий компрес буде дуже доречним, але надмірно хвилюватися не варто. Якщо з'явиться натяк на інфекцію, терміново покажіть ветеринару.
Тримайте прооперовану самку окремо від самців(кастрованих чи ні не має значення), оскільки їй може бути завдано серйозної травми, якщо самець спробує покрити її. Після операції слідкуйте за тим, щоб було тихо і спокійно, щоб кролик не злякався і не запанікував, не провокуйте акробатичні піруети, але дозвольте кролику вільно пересуватися в обжитому місці – кролик сам знає, що завдасть біль, а що ні.
Багато ветеринарів залишають кроликів у клініці на ніч.Якщо ж ветеринар дозволяє забрати кролика додому, то вам необхідно знати наступне:
-Багато самців, після операції повертаючись додому, сподіваються виявити смачну вечерю, переконайтеся, що у них є улюблені гранули, вода та пучок свіжого сіна (хороша свіжа люцерна допоможе кролику відновити апетит).
- Багато самок вважають за краще, щоб їх дали спокій, вони не проявляють апетиту і будуть тихо сидіти в дальньому кутку клітини або в тому куточку будинку, де вони будуть впевнені, що їх не потурбують.
Наступного ранку або до вечора наступного після операції дня необхідно, щоб кролик щось поїв. Не має значення, що і скільки, оскільки з надходженням їжі травний тракт продовжуватиме працювати. Якщо кролик таки не їсть, то, в крайньому випадку, приготуйте йому суміш із кролячих гранул (1 частина гранул і 2 частини води, ретельно подрібніть в блендері, додайте ацидофілін і годуйте маленькими порціями через шприц (без голки) збоку рота кролика). Самка випадково може зняти шви. Накладіть шви знову, а потім зробіть пов'язку, обгорнувши навколо її живота столовий рушник і закріпивши його за допомогою еластичного бандажу. Простежте, щоб кролиця могла вільно дихати, але щоб бандаж був чітко зафіксований.